分子生物学実験の基本【電子版】

- 出版社
- Gakken(旧学研メディカル秀潤社)
- 電子版ISBN
- 978-4-05-989030-0
- 電子版発売日
- 2026/03/31
- ページ数
- 184ページ
- 判型
- A4
- フォーマット
- PDF(パソコンへのダウンロード不可)
電子版販売価格:¥4,400 (本体¥4,000+税10%)
- 印刷版ISBN
- 978-4-05-520154-4
- 印刷版発行年月
- 2025/12
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- 2
- 対応OS
-
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- 1
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概要
バイオ実験の基本とコツがすべてわかる!
動画とイラストで,実験原理から手技のコツまで見えて理解できる!
各実験の原理からコツ・細かな手順までまるっとわかる実験の相棒!
目次
本書の使い方
第1章 分子生物学実験器具・物品の取り扱い方
1. 実験ノートと実験データ
1-1 実験ノートと実験データの重要性
1-2 実験ノートの書き方と保存方法
COLUMN 実験を上手に行うために
2. 実験器具(素材と基本的な使い方)
2-1 分子生物学実験関連器具の素材の特性
2-2 ガラス器具
COLUMN 50mLの溶液Aを超純水で10倍希釈して500mLの溶液Bを作る時の注意点
COLUMN 瓶のラベル
2-3 チューブ・プレート
COLUMN 気密性の確認(蒸発テスト)
2-4 ピペット類
2-5 遠沈管・シャーレ・シリンジ・メンブレンフィルター・凍結保存用チューブ
2-6 その他
COLUMN サンプルのラベル
3. 実験器具の洗浄と滅菌
3-1 ガラス器具の洗浄
3-2 プラスチック器具の洗浄
COLUMN 水の種類
3-3 オートクレーブ処理
3-4 乾熱滅菌処理
4. RNAワークに用いる器具
4-1 ガラス器具(RNase freeのガラス器具)
4-2 プラスチック器具(RNase freeのプラスチック器具)
5. 液体窒素
5-1 液体窒素の取り扱い
5-2 液体窒素によるサンプルの凍結
6. 電子天秤
6-1 電子天秤の使い方
7. pHメーター
7-1 pHを測る方法
7-2 pHメーターの使い方
8. マイクロピペット
8-1 マイクロピペットとは
8-2 基本的な使い方
8-3 応用的な使い方
8-4 ピペット検定
COLUMN マルチチャンネルピペットと電動マイクロピペット
9. メスピペット
9-1 メスピペットの種類
9-2 メスピペットの選び方
9-3 メスピペットの使い方
10. 分光光度計・微量分光光度計
10-1 分光光度計とは
10-2 使い方
10-3 微量分光光度計によるDNAやRNAの定量
11. 遠心機
11-1 遠心機の種類
11-2 ローターの種類
11-3 遠心分離方法の種類
11-4 遠心力と回転数
11-5 遠心機の使い方
12. シェーカー
13. インキュベーター
14. デジタルカメラ
第2章 試薬の調整方法
1. 各種バッファーの特徴
2. 各種バッファーの調整方法
2-1 Tris-HCl(1Mストック溶液)の作り方~濃塩酸で合わせる方法~
2-2 Trisバッファーの作り方~2種類の塩を混ぜて作る方法~
2-3 1M MOPS(pH7.4)の作り方
2-4 リン酸緩衝液(0.1M PB)の作り方
2-5 リン酸緩衝生理食塩水(10×PBS)の作り方
3. その他のストック溶液や一般的な溶液の調整
3-1 5M NaCl
3-2 エタノール
3-3 5N 水酸化ナトリウム
3-4 0.5M EDTA
3-5 TE(Tris-EDTAバッファー)
4. フェノール試薬の調整
4-1 酸性フェノールの作り方
4-2 中性フェノールの作り方
COLUMN 簡易的な中性フェノールの調整
5. クロロホルム,その他
5-1 クロロホルム(クロロホルム+イソアミルアルコール:CIA)の作り方
5-2 フェノールクロロホルム(PCI)
5-3 1M 硫酸マグネシウム(MgSO4)
5-4 3M 酢酸ナトリウム(NaOAc,pH5.2)
5-5 10mg/mL RNase A(DNase free)
5-6 20×SSC(3M NaCl-0.03M クエン酸ナトリウム,pH7.0)
6. 試薬やサンプルの取り扱い・保存
COLUMN 凍結サンプル・試薬の解凍
第3章 DNA/RNAの抽出
1. サンプルの保存方法(DNA・RNA・タンパク質)
1-1 ラベリング
1-2 核酸の保存
COLUMN RNA抽出前の組織のための“RNA保存液”の利用
1-3 タンパク質の保存
2. 組み換え体の管理
2-1 カルタヘナ法
2-2 規制の対象
2-3 遺伝子組み換え生物などの使用
2-4 保管・輸送・譲渡
2-5 ゲノム編集技術で得られる生物の取り扱い
COLUMN 大学連携バイオバックアッププロジェクト(IBBP)
3. DNA/RNAの抽出作業
3-1 ホモジェナイズ
3-2 ホモジェナイズの方法
3-3 酵素によるDNA抽出(ゲノムDNA)
3-4 RNAを抽出する時のホモジェナイズ
3-5 シリカを用いた核酸精製の原理
3-6 カラムキットによるDNA/RNAの抽出
3-7 ビーズによるDNA/RNAの抽出
3-8 フェノール試薬を用いた抽出
3-9 エタノール試薬を用いた抽出
3-10 フェノールクロロホルムを用いた抽出試薬によるゲノムDNAの抽出
第4章 ゲノムデータベースの使い方
1. Ensemblを用いたゲノムデータベースでの遺伝子の探し方
1-1 Ensemblとは
1-2 遺伝子の検索と検索結果の見方
1-3 実際に正しいかどうか系統樹を作ってみよう
2. Blastによる遺伝子検索
2-1 ゲノムデータベースからのBlastによる遺伝子検索
2-2 ゲノムデータベースにおけるBlastの使い方
3. Ensemblで予想cDNAや予想coding sequenceの塩基配列を取得する
3-1 イントロン・エキソン構造の表示
3-2 予測cDNA配列(transcript)を取得し,翻訳開始点を探す
3-3 種間比較
COLUMN 便利なツール~配列取得から遺伝子系統樹作成,配列操作まで~
第5章 PCR
1. PCRの原理と準備
1-1 PCRの原理
1-2 PCRの3つのステップ
2. プライマー設計
2-1 プライマー設計とは
2-2 Tm値
COLUMN Tm値の計算方法
2-3 GC含有率
2-4 プライマー設計で気を付けた方がよいことチェックリスト
2-5 ソフトウェアやウェブサイトを用いたプライマー設計
3. 酵素の選択・エキソヌクレアーゼ活性・ホットスタート
3-1 酵素の選択
3-2 エキソヌクレアーゼ活性
3-3 TdT活性
3-4 ホットスタート
4. PCRの基本プロトコル
4-1 試薬・温度条件
5. 電気泳動
5-1 切り出し・定量(吸光度,蛍光)
5-2 ゲルの作り方・泳動
5-3 染色方法
COLUMN アガロースゲルの先染め・後染めのメリット・デメリット
5-4 溶出方法
5-5 DNAの濃度の測定
6. PCR・電気泳動のトラブルシューティング(2 step PCR,touch down PCR)
6-1 「目的の長さ」が増えない
6-2 収量が少ない
6-3 電気泳動したときのバンドが不明瞭
6-4 複数のバンドがみられる
6-5 電気泳動のバンドがゆがむ
第6章 シーケンス
1. シーケンスの原理
1-1 ジデオキシ法(サンガーシーケンス法)の原理
1-2 プライマー設計時の注意点
2. PCR産物からのシーケンスの準備
2-1 酵素を使う方法
COLUMN 販売されているAlkaline Phosphatase
2-2 ビーズを使う方法(ビーズ精製)
3. プラスミドのシーケンス
3-1 プラスミドのシーケンスの特徴
3-2 プライマー設計時の注意点
3-3 プライマー不要のサービス
4. サイクルシーケンス反応
4-1 BigDye TMterminator v3.1を使用したシーケンス
索引
著者略歴
